异源过表达Atvip1基因增强转基因高粱对盐碱胁迫的抗性

程欣然,蔡欣月,岩温香,牛江帅,吴 荣,牛庭莉,穆云静,戴凌燕

(黑龙江八一农垦大学 生命科学技术学院,黑龙江 大庆 163000)

摘要:为了研究异源过表达Atvip1基因的高粱对盐碱胁迫的耐受性及相应生长情况,采用NaHCO3∶Na2CO3 为5∶1,75 mmol/L,pH 值9.63的盐碱胁迫液在高粱三叶一心期处理,在胁迫0,4,12,24,72,120 h对根系的生长指标、叶绿素含量、抗氧化酶活性以及MDA含量进行测定。结果表明:异源过表达Atvip1基因能缓解盐碱胁迫对高粱幼苗生长的伤害,可使幼苗根表面积和根体积增大,根尖数和分叉数增多,高粱主根褐化出现较晚且症状轻,侧根发生早且数量多,在72 h后仍能保证新叶正常伸展,对地上部生长影响较轻。过表达Atvip1基因可提高转基因高粱根系抗活力,降低MDA的含量,抗氧化酶活性增强;胁迫早期(4~12 h),SOD、CAT和GR作用明显;胁迫中期(24~72 h),所有酶均发挥作用;胁迫后期(120 h),CAT和GSH-PX起重要作用。盐碱胁迫差异转录组分析中,差异表达基因COG分析表明,防御机制在不同时间段中占比较大,获得抗氧化酶相关差异表达基因42个。异源过表达Atvip1基因可通过缓解盐碱胁迫对光合作用和生长发育的影响,降低活性氧破坏及膜损伤来提高转基因高粱对盐碱胁迫的抗性。

关键词:高粱;Atvip1;过表达;盐碱胁迫;生长发育;抗性

土壤盐碱化是全球农业的主要环境威胁,影响着全球约20%的耕地和近1/2的灌溉土地,导致土壤进一步退化[1]。我国是世界盐碱地大国,耕地盐碱化面积为 7.6×106 hm2,近 1/5 耕地发生盐碱化,其影响正变得越来越严重。东北地区是我国土地盐碱化最严重的地区之一,同时也是世界三大苏打盐碱土集中分布区之一[2]。盐化土壤中含有大量的可溶盐,盐分的增加降低了土壤水势,导致植物吸水困难,对植物造成氧化胁迫、离子毒性、渗透胁迫和代谢紊乱,从而影响植物的生长发育和光合作用[3-4]。除上述危害外,碳酸钠和碳酸氢钠等形成的碱化土壤,还会对植物造成碱环境的危害,即高pH值对植物的伤害[5]。目前,国内外科学家在植物耐盐分子机制研究方面进行了大量工作,但多数研究集中在响应盐胁迫的分子机制,而对碱胁迫研究极少,由此很难分析天然盐碱地综合胁迫反应背后的耐性机制。植物在遭受盐碱胁迫时会产生大量活性氧(Reactive oxygen species,ROS),如不及时清除,会对自身正常的生长发育造成很大影响,包括抑制SOD、POD和CAT等的活性;降低叶绿素的含量,抑制植物的光合作用;破坏细胞膜的稳定性,使膜质中不饱和脂肪酸过氧化作用产物 MDA过分累积,进而降低植物的抗逆性[6]

高粱(Sorghum bicolor (L.)Moench)具有耐旱、耐涝、耐盐碱、耐瘠薄、耐高温和耐干热风等特点,可在高温、低洼和盐碱等边际性土地上进行种植,具有粮饲、造酒、帚用、编织和替代能源等多种用途[7]。高粱的根系是摄取、运输和储存土壤水分和养分的关键器官,也是抵御逆境胁迫的第一屏障[8]。根系结构的变化会影响物质运输、激素合成和信号转导,因此,良好的根系有利于高粱在盐碱环境中提高自身的稳定性,提高其对盐碱胁迫的耐受性[9]

研究者利用酵母双杂交发现了与VirE2(Type IV Secretion System Single-stranded DNA Binding Protein VirE2)相互作用的拟南芥蛋白并且命名为AtVIP1(Arabidopsis thaliana VirE2-interacting Protein 1)[10-12]。AtVIP1属于拟南芥bZIP(Basic Leucine-Zipper)家族的IX亚家族,因具有2个拷贝的NLS(Nuclear Location Sequence)序列,表明此蛋白可以定位于细胞核中[13]。目前,针对VIP1转录因子的相关研究主要集中在模式植物拟南芥上,且重点关注核质穿梭现象及机制。VIP1及其同系物可以与钙调蛋白相互作用,它们的核质穿梭需要钙信号[14];还可能通过14-3-3蛋白解离使VIP1去磷酸化诱导核定位[15],或通过PP2A介导VIP1去磷酸化而入核[16]。研究表明,VIP1可能影响农杆菌转化效率[17],还可能涉及硫的利用、淀粉积累、渗透胁迫信号传导和触摸诱导的根运动[18-21]。但VIP1是否影响植物对苏打盐碱胁迫的抗性还未见报道。据此,本研究使用苏打盐碱胁迫液对异源过表达拟南芥Atvip1转基因高粱进行处理,通过表型和抗逆生理相关指标分析来研究转录因子VIP1对高粱抵抗盐碱胁迫的影响,为高粱耐盐碱分子育种提供新的靶基因资源。

1 材料和方法

1.1 试验材料

试验采用沙培法,选用穴高40 mm、上口径40 mm、下口径15 mm、单容积40 mL 的72 孔穴育苗盘。高粱野生型资源为P898012,将拟南芥转录因子VIP1基因构建35S-Atvip1过表达载体,通过农杆菌介导法,以高粱幼胚为外植体通过遗传转化获得异源过表达Atvip1基因的转基因高粱株系,经实时荧光定量PCR法检测,转基因高粱株系中已转入外源拟南芥的Atvip1基因且过表达,后代经纯化后留种备用。本研究中所用转基因种子为T4,由黑龙江八一农垦大学生命科学技术学院植物基因功能实验室提供,命名为Atvip1-7-T4高粱。

1.2 试验设计

1.2.1 高粱幼苗培养与处理 挑选籽粒饱满大小均一的种子,先用蒸馏水将种子洗2~3次,用75%酒精浸泡2~3 min,后用蒸馏水冲洗2~3次,再用2% 次氯酸钠浸泡3~4 min,最后用蒸馏水冲洗5~6次,将消毒后的种子用蒸馏水萌动12 h。在培养皿中铺入3 层滤纸,每皿加入10 mL蒸馏水,将萌动后的种子均匀摆放在滤纸上,每皿120 粒,25 ℃、16 h/8 h 人工气候培养箱中培养24 h。挑选发芽一致的种子移栽至72孔育苗穴盘中(一苗一穴),每2 d用Hoagland营养液浇灌1次,培养条件为25 ℃、16 h/8 h。待幼苗长至三叶一心时,用Hoagland营养液配置NaHCO3∶Na2CO3为5∶1的胁迫液(75 mmol/L,pH 值9.63)进行胁迫处理。在0,4,12,24,72,120 h时取样进行生长指标测定,同时把部分根系用液氮速冻后置于-150 ℃冰箱冻存,用于生理指标测定。试验中分为2组,野生型(WT)和过表达Atvip1转基因株系(TR),每组试验重复3次。

1.2.2 高粱根系形态分析 利用单反照相机记录每时间点的幼苗生长状态。根系形态指标用万深LA-S系列植物图像分析仪(根系分析独立版)进行扫描并分析指标参数(根长、表面积、体积)。

1.2.3 高粱抗性相关指标测定 叶绿素含量测定利用CID bio-science公司生产的叶绿素测定仪进行测定。根系超氧化物歧化酶(SOD)总活性、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)、谷胱甘肽还原酶(GR)和抗超氧阴离子自由基活性测定均利用南京建成科技有限公司生产的试剂盒进行。丙二醛(MDA)含量测定采用硫代巴比妥酸法[22]

1.2.4 高粱幼苗盐碱胁迫差异转录组测序 取盐碱胁迫0,4,24,72 h的TR和WT组高粱整株幼苗,利用TRIzol试剂提取总RNA,设置3次生物学重复,干冰储存运输,送至上海拜谱生物科技有限公司转录组测序。对于具有生物重复的样品,用DEseq对2个条件/组进行差异表达分析。DEseq提供了利用基于负二项分布的模型确定数字基因表达数据中差异表达的统计例程。所得的P值使用Benjamini和Hochberg的方法进行调整,以控制错误发现率。DEseq发现P<0.01的基因被分配为差异表达基因(DEG)。

1.3 数据处理

利用IBM SPSS Statistic 20软件进行数据统计分析,采用独立样品t检验(Independent-Samples t Test),通过最小显著性差异(LSD)检验对2个处理组数据进行比较。P<0.05、P<0.01或P<0.001表示数据具有统计学意义。利用WPS EXCEL 2016进行数据计算,Prism 8软件进行作图。

2 结果与分析

2.1 盐碱胁迫对转基因高粱表型及叶绿素含量的影响

大量研究显示,在苏达盐碱胁迫下,植物生长发育缓慢,根系发育不良,新枝生长数少,影响植株的外部形态。盐碱胁迫下2个处理组表型结果如图1。在0 h,WT 组高粱只有主根,TR组高粱根系侧根多,且在茎基部生出1~2条侧根。从4~120 h,WT 组高粱主根在胁迫早期4 h就开始褐化,并逐渐加剧,根基部腐败严重;而TR组高粱主根褐化出现较晚且症状轻。在24 h,WT组幼苗新叶出现卷曲,TR组新叶正常伸展;72 h,WT 组高粱生长被抑制,新叶蜷缩萎蔫;TR组新叶才开始出现卷曲。120 h后,WT组地上部底部叶片褐化,顶部叶片枯黄干缩;TR组老叶和新叶的伸展较好,叶片只有部分黄化。盐碱胁迫对高粱叶绿素含量的影响如图2,WT 组和TR 组的叶绿素含量均呈先上升后下降的变化趋势,在24 h叶绿素含量达到最大值,但TR组叶绿素含量在各时间段内均显著高于WT 组。可见盐碱胁迫在24 h后对高粱光合作用的抑制效果较明显,转基因高粱可有效缓解盐碱胁迫带来的危害。

A.整株及地上部生长情况。B.地下部生长情况。WT.野生型;TR.过表达Atvip1基因植株。
A.Growth of whole plant and aboveground parts. B.The growth of the underground part. WT. Wild type;TR.Plants with overexpression of Atvip1 gene.

图1 盐碱胁迫对高粱表型的影响
Fig.1 Effects of saline-alkali stress on sorghum phenotype

2.2 盐碱胁迫对转基因高粱根系生长相关指标的影响

在盐碱胁迫下,根系生长形态的优良决定植株的发育情况。盐碱胁迫后WT和TR组高粱根系的表面积、体积、根尖数、分叉数动态结果如图3。2组高粱根系生长随胁迫时间延长出现先升高后降低的趋势,在0~12 h,TR组高粱的表面积、体积、根尖数呈上升趋势,显著高于WT 组高粱,但分叉数差异不显著。在24 h,TR组高粱显著优于WT组高粱,各指标达到最大值。在72~120 h,2组高粱的根系生长指标降低,但TR组高粱生长指标除分叉数外均显著高于WT 组高粱。

不同小写字母表示处理间差异显著(P<0.05)。图3-5同。
The different small letters indicate significant differences among treatments(P<0.05).The same as Fig.3-5.

图2 盐碱胁迫对高粱叶绿素含量的影响
Fig.2 Effects of saline-alkali stress on chlorophyll content of sorghum

图3 盐碱胁迫对高粱根系生长相关指标的影响
Fig.3 Effects of saline-alkali stress on the growth indexes of sorghum roots

2.3 盐碱胁迫对转基因高粱根系抗氧化酶系统的影响

如图4所示,抗超氧阴离子自由基活力可反映高粱根系的抑制能力,胁迫24 h内,抗活力逐渐升高,随后下降,且TR组抗活力显著高于WT组高粱(图4-A)。由图4可知,在0 h,WT组的SOD、CAT和POD等抗氧化酶活性都显著高于TR组,而GR的活性显著低于TR组,GSH-PX活性在2组中无显著性差异;从4~72 h,TR组SOD、CAT和GR活性均显著高于WT组(图4-A、B、E),GSH-PX酶活性在12~72 h均显著高于WT组(图4-F),而POD活性仅在12~24 h显著高于WT组(图4-D);在120 h,TR组仅CAT和GSH-PX酶活性显著高于WT组。从时间上来看,24 h,除CAT外,TR组各酶活性均达到最高值。从TR组酶活性动态变化来看,胁迫早期(4~12 h),SOD、CAT和GR作用明显;胁迫中期(24~72 h),所有酶均发挥作用;胁迫后期(120 h),CAT和GSH-PX起重要作用;CAT酶在抵抗盐碱胁迫的全过程中均发挥作用。其中,变化幅度最大的酶是CAT和GR,CAT酶活性在12 h升高了2.47倍,GR酶活性在12 h升高了2倍。

图4 盐碱胁迫下高粱根系抗氧化酶系统动态变化
Fig.4 Dynamic changes of antioxidant enzyme system in sorghum roots under saline-alkali stress

2.4 盐碱胁迫对转基因高粱根系MDA含量的影响

MDA是具有细胞毒性的物质,能与膜结构上的酶和蛋白质相结合,发生交联作用而使其失活,从而导致膜结构被破坏。由图5可知,胁迫初期0,4 h,TR组根系MDA含量显著高于WT组;在12 h,TR组根系MDA含量快速下降,且显著低于WT 组;在 24,72,120 h,TR组高粱根系MDA含量开始增加,但仍显著低于WT组。可见,在盐碱胁迫24 h内,异源过表达Atvip1基因高粱可将MDA控制在较低水平。

2.5 盐碱胁迫差异转录组中DEGs的COG注释

对差异转录中发现的DEGs进行COG功能预测和分类。在1 413 个NR位点中,510 个 DEGs被归为COG分类。因一个DEG可以被分配给多个COG功能,因此,共获得611 个COG 功能注释,这些注释被分为25 个功能类别(图6)。其中,防御机制类别中有62个COG功能注释,占10.15%。在各个时间内,防御机制所涉及的DEGs数量占比较大(图6中红色箭头所示),而在4 h,防御相关的差异基因最多。

图5 盐碱胁迫对高粱MDA含量的影响
Fig.5 Effects of saline-alkali stress on MDA content of sorghum

2.6 盐碱胁迫下差异转录组中抗氧化酶相关基因的表达分析

为进一步分析在胁迫过程中,抗氧化酶在转录水平上的差异表达情况,本研究从转录组测序数据中筛选出这5类抗氧化酶差异表达基因共42 个,并针对基因表达量(FPKM值)采用TR组/WT组的差异倍数进行热图分析(图7)。结果显示,7个SOD基因,包括Cu,Zn-SOD(Sb02g042170Sb01g035350Sb07g023950Sb01g042660)和Fe,Mn-SOD(Sb10g002970Sb09g011450Sb06g025970);22个POD基因、3个CAT基因、3个GR基因和7个GSH-PX基因在TR和WT 2组中不同时间上的表达量存在差异;与WT组相比,TR组同一类酶的各个相关基因表达水平在不同时间上有上调和下调2种方式,各基因转录水平上与抗氧化酶蛋白水平上在各时间表达不完全一致,它们之间没有明显的相关性。

图6 DEGs的COG注释分类统计
Fig.6 DEGs COG annotated classification chart

3 讨论

盐碱危害是导致作物产量降低的主要因素之一,对植物的生长发育具有明显的抑制效应,生物量的积累也会下降。为了适应盐碱环境,植物通常改变自身形态和生理代谢来维持生存[23-24]。根是首先接触盐碱胁迫的器官,在盐碱感应中起重要作用[25-26]。植物受盐碱胁迫后,大量失水或吸水困难,导致植物渗透系统失控,从而大量减产[27]。VIP1是bZIP转录因子,是MPK3的靶标,被认为与植物防御反应有关[16]。Lapham等[28]发现,vip1突变体植株对盐生长的耐受性发生改变,表明vip1在盐胁迫中起作用,但其具体作用机制未知。本研究中,与野生型WT组相比,过表达Atvip1基因的TR组无论是地上部还是地下部均对苏打盐碱胁迫具有较强抗性,体现为根系表面积和体积增大,根尖数及分叉数增多,根部褐化晚且根基部腐败较轻。地上部幼苗新叶伸展及生长受抑制较小,叶绿素含量显著高于野生型。可见,过表达Atvip1基因可通过降低盐碱胁迫对植株光合作用和生长发育的影响,从而提高高粱抗性。

前人研究表明,盐碱胁迫会显著增加植物ROS的累积,改变细胞膜的通透性,影响物质运输,是生物体内ROS的主要来源,过量可致植物组织损伤[29-30]。随着盐碱胁迫时间的累积,H2O2在植物体内会大量积累,植物体内的保护酶系统的活性逐渐升高[31],MDA也是衡量植物是否受到胁迫的常用指标,结合抗氧化酶系统如SOD、CAT、POD、GR和GSH-PX等活性来确定植物对胁迫环境的耐受性程度[32-34]。本研究中,TR组在盐碱胁迫后,抗氧化酶活性在不同时间段显著增强,胁迫早期,SOD、CAT和GR作用明显;胁迫中期,所有酶均发挥作用;胁迫后期,CAT和GSH-PX起重要作用;CAT在TR组高粱抵抗盐碱胁迫的全过程中均发挥作用。高活性的GR有利于GSH-PX的形成,为清除活性氧提供还原力。可见,与WT组相比,过表达Atvip1基因可正调控盐碱胁迫下抗氧化酶的活性,使得对活性氧的清除能力显著增强。MDA含量呈现先降低再升高的趋势,表明高粱幼苗生长受到了明显抑制,但TR组MDA含量在12 h之后较WT组低,说明过表达Atvip1基因可显著缓解盐碱胁迫导致的高粱幼苗ROS积累,降低MDA的累积,保护了细胞膜的稳定性,从而增强高粱对盐碱胁迫的抗性。

图7 高粱抗氧化系统关键酶基因量差异倍数表达热图
Fig.7 Heat map of key enzyme gene expression in antioxidant system of sorghum

分析盐碱胁迫下WT组和TR组转录组数据,DEGs的COG功能显示,胁迫4 h,参与防御机制的差异基因所占的比重大幅度增加,在24,72 h时仍保持较高占比。筛选获得了42个与SOD、CAT、POD、GR和GSH-PX等抗氧化酶相关的差异基因,TR组酶活性动态变化有上调、下调2种调节方式,这与张贝贝[35]研究甜瓜对盐碱胁迫响应的转录组分析的结果类似。本研究中抗性酶在基因水平和蛋白水平表达情况存在差异,原因可能有2种:一方面是取样不同,差异转录组测序是针对整个植株开展,而抗性酶活性测定仅针对根系进行;另一方面是分子调控机制,基因的表达存在短时间应激高表达,但大部分基因在应激过后还会下降,而蛋白可能维持一个相对长时间的上调;同时一个基因可能会有多个转录本,且还存在转录调控和翻译后修饰等过程。

从盐碱胁迫的时间节点可以看出,盐碱胁迫4 h后,高粱已启动了基因表达、抗氧化酶活性升高和防御机制增强等过程,且该过程一直持续至24 h。盐碱胁迫24 h是一个重要节点,在这之前植物通过积极调控体内各种生理生化代谢过程来抵御胁迫造成的伤害,从而保障生长发育顺利进行;24 h之后,由于胁迫的持续影响,导致代谢过程和生长发育均受到严重抑制。过表达Atvip1基因高粱在整个胁迫过程中无论在代谢过程还是生长发育方面均表现出较强的抗性,表明该基因的转入提高了高粱对氧化胁迫的耐受力,在响应盐碱胁迫中发挥着重要的作用,但该基因具体作用的分子机制还有待于进一步研究。

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Heterologous Overexpression of Atvip1 Gene Enhances the Resistance of Transgenic Sorghum to Saline-alkali Stress

CHENG Xinran,CAI Xinyue,YAN Wenxiang,NIU Jiangshuai,WU Rong,NIU Tingli,MU Yunjing,DAI Lingyan

(College of Life Science and Biotechnology,Heilongjiang Bayi Agricultural University,Daqing 163000,China)

Abstract In order to study the tolerance of heterologously overexpressed Atvip1 gene in sorghum to defense saline-alkali stress and the corresponding growth,NaHCO3∶Na2CO3 of 5∶1 solution with 75 mmol/L and pH 9.63 was used in sorghum at the stage of three leaves and one heart. The root growth index,chlorophyll content,antioxidant enzyme activity and MDA content were measured at 0,4,12,24,72,and 120 h of stress. The results indicated that the heterologous overexpression of Atvip1 gene could alleviate the damage of saline-alkali stress on the growth of sorghum seedlings,increase the root surface area and root volume,the number of root tips and branches,and also cause the browning of sorghum main roots to appear later and mild symphonys,and the earlier and more lateral roots occurrence. The new leaves could still be normally extended at 72 h and present little effect on the growth of aboveground. Overexpression of Atvip1 gene could increase the activity of the content of MDA and enhance the activities of antioxidant enzymes in transgenic sorghum roots. SOD,CAT and GR had obvious effects at 4-12 h during the early stage of stress,respectively. All enzymes played roles during the middle of stress at 24-72 h. CAT and GSH-PX played important roles at the later stage of stress at 120 h. On the base of differential transcriptome analysis of saline-alkali stress,COG analysis of differentially expressed genes(DEGs)showed that defense mechanisms accounted for a relatively large proportion during various periods,and 42 DEGs related to antioxidant enzymes were obtained. Heterologous overexpression of Atvip1 gene can improve the resistance of transgenic sorghum to saline-alkali stress by alleviating the effects on photosynthesis,growth and development,reducing the damages of reactive oxygen species and membrane damage.

Key words Sorghum; Atvip1;Overexpression;Saline-alkali stress;Growth and development;Resistance

收稿日期:2021-05-14

基金项目:杂粮作物功能基因高效发掘利用平台构建(2018YFD1000702);杂粮作物抗逆和品质形成与调控(2018YFD100700);黑龙江省博士后落地科研启动金项目(LBH-Q19164);校留学归国人才科研启动计划(ZRCLG201906);黑龙江省自然科学基金项目(C201-6046);黑龙江省杂粮生产与加工优势特色学科资助项目(2020)

作者简介:程欣然(1996-),女,黑龙江哈尔滨人,硕士,主要从事生物化学与分子生物学研究。

通讯作者:戴凌燕(1977-),女,湖南衡阳人,教授,博士,主要从事植物生理方向的研究。

中图分类号:Q78;S514.03

文献标识码:A

文章编号:1000-7091(2021)04-0001-09

doi10.7668/hbnxb.20191908